上一期我们聊了浮游植物采样前 90% 的人会忽略的准备细节，做好万全准备只是第一步，真正到了现场采样、样品保存运输乃至后续初步处理阶段，更是处处藏着影响数据准确性的 “小坑”。哪怕一个操作疏忽，都可能让前期的准备功亏一篑，导致浮游植物群落结构、生物量等数据失真，失去监测的意义。作为为同学办实事的生态监测实操分享，今天这篇现场 + 后续全流程注意事项，手把手教你避开采样实操的各类误区，让每一份水样都能真实反映水域生态状况！

一、现场采样实操：精准操作，拒绝 “随手采”

现场操作规范是保障样品代表性和完整性的关键，需严格区分定量与定性采样细节，确保步骤科学严谨，后续固定与暂存需同步衔接、规范操作。

1.定量采样规范

（1）使用有机玻璃采水器或Niskin采水器，严禁直接扔入水中；下放时保持垂直，避免触碰水底底泥（防止底泥藻类混入导致数据偏高）。

（2）到达预设深度后，轻拉挂绳触发开关，水样完全充满后缓慢上提，避免过快晃动导致水样溢出或产生大量气泡（气泡会破坏细胞、影响体积计量）。

（3）分层采样按从下到上顺序，每采完一个深度，用现场水样润洗采水器后再采下一个，杜绝交叉污染。

2定性采样规范（25号浮游生物网）

（1）垂直拖网：从水底缓慢提至水面，速度控制在0.5m/s左右（过快漏样、过慢稀释）；水平拖网：网口与水流垂直，拖行10-20米，藻类密集区可缩短距离防网口堵塞。

（2）拖网后，将网体水样缓慢浓缩至收集管，用少量现场水样冲洗网壁，确保全部收集，严禁直接挤压网体（避免损坏细胞形态）。

3.平行样与水样转移要求

（1）平行样需遵循“同一点位、同一深度、同一时间”原则，采集间隔不超过5分钟，现场环境突发变化需重新采集。

（2）采集完成后，立即沿瓶壁缓慢将水样转移至样品瓶，减少气泡产生。

4.样品固定与暂存要求

样品固定与暂存的核心是现场立即操作，避免环境变化导致细胞形态改变、群落异常，影响后续分析。

（1）形态学观察样品（固定处理）

添加鲁哥氏液时边加边轻摇，确保混合均匀，添加量为水样体积的1.5%（量多易导致细胞收缩，量少无法有效固定）。

长期保存：鲁哥氏液固定30分钟后，加4%甲醛辅助固定；甲醛有刺激性，操作时需戴手套、口罩，避免密闭空间大量添加。

（2）活体样品（暂存处理，适用于流式细胞术、叶绿素a检测）

严禁添加任何固定剂，立即放入避光保温箱，0-4℃低温保存，冰袋不直接接触样品瓶（防止结冰损伤细胞）。

避免剧烈摇晃，尽量静置，减少细胞损伤。

（3）通用要求

样品固定/暂存后立即密封，用保鲜膜缠绕瓶塞与瓶身连接处，防止漏液或污染。

核对标签信息，确保采样点位、日期、时间、水深、样品类型、固定剂添加量、采集人等完整，标签贴在样品瓶中部，避免浸泡、脱落。

二、样品固定与暂存：现场即处理，一秒不耽误

浮游植物样品固定与暂存的核心是现场立即操作，避免环境变化导致细胞形态改变、群落异常，影响后续分析。

1. 形态学观察样品（固定处理）

（1）添加鲁哥氏液时边加边轻摇，确保混合均匀，添加量为水样体积的1.5%（量多易导致细胞收缩，量少无法有效固定）。

（2）长期保存：鲁哥氏液固定30分钟后，加4%甲醛辅助固定；甲醛有刺激性，操作时需戴手套、口罩，避免密闭空间大量添加。

2. 活体样品（暂存处理，适用于流式细胞术、叶绿素a检测）

（1）严禁添加任何固定剂，立即放入避光保温箱，0-4℃低温保存，冰袋不直接接触样品瓶（防止结冰损伤细胞）。

（2）避免剧烈摇晃，尽量静置，减少细胞损伤。

通用要求

（1）样品固定/暂存后立即密封，用保鲜膜缠绕瓶塞与瓶身连接处，防止漏液或污染。

（2）核对标签信息，确保采样点位、日期、时间、水深、样品类型、固定剂添加量、采集人等完整，标签贴在样品瓶中部，避免浸泡、脱落。

三、样品运输：全程呵护，把控温光与时效

样品运输的关键是保持样品稳定，运输不当会直接导致前期工作失效，新手需重点注意。

1.固定后样品运输：避免阳光直射与高温，样品瓶直立放入保温箱，用泡沫垫固定防晃动破损。运输时效不超过 48 小时，到实验室后立即阴凉存放。

2.活体样品运输（重点）：采样后4 小时内送至实验室，全程0–4℃低温、完全避光，保温箱密封。不与固定样品混放，防止固定剂污染；样品瓶不堆叠，冰袋充足。

3.样品管理：保温箱外贴标识，注明采样点位、数量、运输人及联系方式。长途运输需中途检查冰袋，及时补充，保证低温不中断。

四、现场收尾与器材处理：环保 + 清洁，不留后遗症

采样完成后的现场收尾与器材初步处理，既影响器材复用，也关乎生态保护，是生态监测人的基本素养，绝不能 “采完就完事”。

1.垃圾与废液规范处理：现场所有垃圾（手套、包装等）必须全部带回实验室，不得丢弃；剩余固定剂、清洗废水严禁直接倒入水体，避免二次污染；若不慎破坏水生植被，应及时恢复，保护生态原貌。

2.器材现场初步清洗：采水器、浮游生物网等器材用现场水样冲洗 3–4 次，去除残留样品，防止交叉污染与藻类滋生；沥干后装入专用收纳袋，避免磕碰刮花。

3监测数据及时整理：实时录入 pH、溶解氧、GPS 等数据，与纸质记录核对；发现异常需注明现场情况，为后期分析提供依据。

五、应急处理：突发状况不慌，做好备用方案

野外采样环境复杂，难免遇到天气突变、设备故障、样品瓶破损等突发状况，提前做好应急准备，才能从容应对，最大程度保证样品的有效性。若遇到暴雨、大风、雷电等恶劣天气，要立即停止采样，将已采集的样品妥善密封后转移至安全区域，人员撤离至安全地带，切勿在水边逗留；待天气好转后，检查样品是否受到污染，若样品无异常则继续采样，若已污染则重新采集。若现场设备出现故障，如 pH 计没电、GPS 失灵、采水器开关损坏，要立即使用备用设备：提前在采样包中准备好备用电池、备用采水器、纸质地图，确保基础数据能正常采集；若备用设备也无法使用，要在记录中注明，该点位的采样可择期进行，不要勉强采集导致数据失真。若样品瓶不慎破损，水样泄漏，要立即停止使用该样品瓶，若剩余水样足够，转移至备用样品瓶中并重新添加固定剂并做好暂存，若水样不足，则放弃该样品，重新采集，切勿将泄漏的水样拼凑使用。

浮游植物采样作为水生态监测的基础环节，从来都不是 “简单的取水”，而是从准备、现场操作到后续处理的系统性工作，每一个细节都关乎数据的科学性和代表性。对于我们生态专业的同学来说，做好每一次采样，把每一个细节落实到位，不仅是提升实验技能的过程，更是用专业能力守护水域生态的实际行动。